1.主題內容和適用范圍
                本程序和檢驗方法規定了評價食品保健作用的統一程序和檢驗方法。
               
            本程序和檢驗方法適用于評價食品的免疫調節、延緩衰老、改善記憶、促進生長發育、抗疲勞、減肥、耐缺氧、抗輻射、抗突變、抑制腫瘤、調節血脂、改善性功能等作用。
                本程序和檢驗方法規定了評價食品保健作用的人體試食試驗規程。
                2.進行食品保健作用評價的基本要求
                2.1對受試物的要求
                2.1.1提供受試物的物理、化學性質（包括化學結構、純度、穩定性等）等有關資料。
                2.1.2受試物必須是規格化的產品，即符合既定的生產工藝、配方及質量標準。
                2.1.3提供受試物安全性毒理學評價的資料，受試物必須是已經過食品安全性毒理學評價確認為安全的物質。
                2.2對實驗動物的要求
                2.2.1根據各種試驗的具體要求，合理選擇實驗動物。常用大鼠和小鼠，品系不限，推薦使用近交系動物。
                2.2.2
            動物的性別不限，可根據試驗需要進行選擇。動物的數量的要求為小鼠每組至少10只（單一性別），大鼠每組至少8只（單一性別）。動物的年齡可根據具體試驗需要而定。
                2.2.3 動物應達到二級實驗動物的要求。
                2.3 給受試物的劑量及時間
                2.3.1
            各種試驗至少應設3個劑量組，1個對照組，必要時可設陽性對照組。劑量選擇應合理，盡可能找出最低有效劑量。在3個劑量組中，其中一個劑量應相當于人推薦攝入量的5－10倍左右。
                2.3.2 給受試物的時間應根據具體試驗而定，原則上至少1個月。
                3.試驗項目、試驗原則及結果判定
                3.1 免疫調節作用
                3.1.1 試驗項目
                3.1.1.1.1 臟器/體重比值
                胸腺/體重比值
                脾臟/體重比值
                3.1.1.1.2 細胞免疫功能測定
                小鼠脾淋巴細胞轉化實驗
                遲發型變態反應
                3.1.1.1.3 體液免疫功能測定
                抗體生成細胞檢測
                血清溶血素測定
                3.1.1.1.4 單核－巨噬細胞功能測定
                小鼠碳廓清試驗
                小鼠腹腔巨噬細胞吞噬雞紅細胞試驗
                3.1.1.1.5 N細胞活性測定
                3.1.1.2 人體試食試驗
                3.1.1.2.1 細胞免疫功能測定
                外周血淋巴細胞轉化試驗
                3.1.1.2.2 體液免疫功能試驗
                單向免疫擴散法測定IgG、IgA、IgM
                3.1.1.2.3 非特異性免疫功能測定
                吞噬與殺菌試驗
                3.1.1.2.4 N細胞活性測定
                3.1.2 試驗原則
               
            要求選擇一組能夠全面反映免疫系統各方面功能的試驗，其中細胞免疫、體液免疫、單核－巨噬細胞功能三個方面至少各選擇1種試驗，在確保安全的前提下盡可能進行人體試食試驗。
                3.1.3 結果判定
               
            在一組試驗中，受試物對免疫系統某方面的試驗具有增強作用而對其他試驗無抑制作用，可以判定該受試物具有該方面的免疫調節效應；對任何一項免疫試驗具有抑制作用可判定該受試物具有免疫抑制效應。
               
            在細胞免疫功能、體液免疫功能、單核－巨噬細胞功能及N細胞功能檢測中，如有兩個以上（含兩個）功能檢測結果陽性，即可判定該受試物具有免疫調節作用。
                3.2 延緩衰老作用
                3.2.1 試驗項目
                3.2.1.1 動物試驗
                3.2.1.1.1 生存試驗
                小鼠生存試驗
                大鼠生存試驗
                果蠅生存試驗
                3.2.1.1.2 過氧化脂質含量測定
                血（或組織）中過氧化脂質降解產物丙二醛（MDA）含量測定
                組織中脂褐質含量測定
                3.2.1.1.3 抗氧化酶活力測定
                血（或組織）中超氧化物歧化酶（SOD）活力測定
                血（或組織）中谷胱甘肽過氧化物酶（GS-PX）活力測定
                3.2.1.2 人體試食試驗
                血中過氧化脂質降解產物丙二醛（MDA）含量測定
                血中超氧化物歧化酶（SOD）活力測定
                血中谷胱甘肽過氧化物酶（GS－PX）活力測定
                3.2.2 試驗原則
               
            衰老機制比較復雜，迄今尚無一種公認的衰老機制學說，因而無單一、簡便、實用的衰老指標可供應用，應采用盡可能多的試驗方法，以保證試驗結果的可信性。動物試驗，除上述生存試驗，過氧化脂質含量測定、抗氧化酶活力測定3個方面各選一項必做外，可能時應多選擇一些指標（如腦、肝組織中單胺氧化酶（MAO-B）活力測定等）加以輔助。生存試驗是最直觀、最可靠的實驗方法，果蠅具有生長周期短、繁殖快、飼養簡便等優點，通常多選果蠅作生存試驗，但果蠅種系分類地位與人較遠，故必須輔助過氧化脂質含量測定及抗氧化酶活力測定才能判斷是否具有延緩衰老作用。生化指標測定應選用老齡鼠，除設老齡對照外，最好同時增設少齡對照，以比較受試物抗氧化的程度，必要時可將動物試驗與人體試食試驗相結合綜合評價。
                3.2.3 結果判定
                若大鼠或小鼠生存試驗為陽性，即可判定該受試物具有延緩衰老的作用。
                若果蠅生存試驗，過氧化脂質和抗氧化酶三項指標均為陽性，即可判定該受試物具有延緩衰老的作用。
                若過氧化脂質和抗氧化酶兩項為陽性，可判定該受試物具有抗氧化作用，并提示可能具有延緩衰老作用。
                3.3 改善記憶作用
                3.3.1 動物試驗
                跳臺試驗
                避暗試驗
                穿梭箱試驗
                水迷宮試驗
                3.3.1.2 人體試食試驗
                韋氏記憶量表
                臨訂記憶量表
                3.3.2 試驗原則
                3.3.2.1
            試驗應通過訓練前、訓練后及重測驗前3種不同的給予受試物方法觀察其對記憶全過程（記憶的獲得、記憶鞏固、記憶再現）的影響。
                3.3.2.2 應采用一組（2個以上）行為學試驗方法，以保證實驗結果的可靠性。
                3.3.2.3 人體試食試驗為必做項目，并應在動物試驗有效的前提下進行。
                3.3.2.4
            除上述試驗項目外，還可以選用嗅覺厭惡試驗、味覺厭惡試驗、操作式條件反射試驗，連續強化程序試驗、比率程序試驗、間隔程序試驗。
                3.3.3 結果判定
                動物試驗2項或2項以上的指標為陽性，且2次或2次以上的重復測試結果一致，可以認為該受試物具有改善該類動物記憶作用；
                若人體試食試驗結果陽性，則可認為該受試物具有改善人體記憶作用。
                3.4 促進生長發育作用
                3.4.1 試驗項目
                3.4.1.1 胎仔情況  活胎數、雄比例、死胎數、分娩胎仔總數。
                3.4.1.2 體重及食物利用率  記錄出生時及生后4、7、14、21、30、60d幼鼠的體重，計算斷乳后幼鼠的食物利用率。
                3.4.1.3 生理發育指標  記錄耳廓分離、門齒萌出、開眼、長毛時間、陰道開放、睪丸下降時間。
                3.4.1.4 神經反射指標 
            平面翻正、前肢抓力、懸崖回避、嗅覺定位、聽覺警戒、負趨地性、回旋運動、視覺發育、空中翻正、游泳發育。
                3.4.2 試驗原則
                3.4.2.1 給受試物的時間可根據具體情況選擇在母鼠孕期或哺乳期至成年期。
                3.4.2.2 在神經反射指標中應選擇一組（5個以上）的行為學試驗方法，以保證結果的可靠性。
                3.4.3 結果判定
                在胎仔情況、體重及食物利用率、生理發育、神經反射4類指標中有3類以上（含3類）指標為陽性，可認為受試物有促進生長發育的作用。
                3.5 抗疲勞作用
                3.5.1 試驗項目
                負重游泳試驗
                爬桿試驗
                血乳
                血清尿素氮
                肝/肌糖原測定
                3.5.2 試驗原則
               
            運動試驗與生化指標檢測相結合。在進行游泳或爬桿試驗前，動物應進行初篩。除以上生化指標外，還可檢測血糖、乳酸膠氫、血紅蛋白以及磷肌酸等指標。
                3.5.3 結果判定
                若1項以上（含1項）運動試驗和2項以上（含2項）生化指標為陽性，即可以判斷該受試物具有抗疲勞作用。
                3.6 減肥作用
                3.6.1 減肥原則
                3.6.1.1 減除體現人多余的脂肪，不單純以減輕體重為標準。
                3.6.1.2 每日營養素的攝入量應基本保證機體正常生命活動的要求。
                3.6.1.3 對機體健康無明顯損害。
                3.6.2 試驗項目
                3.6.2.1 動物試驗
                體重
                體內脂肪重量（睪丸及腎周圍脂肪墊）
                3.6.2.2 人體試食試驗
                體重，體重指數，腰圍，腹圍，臀圍
                體內脂肪含量
                3.6.3 試驗原則
               
            在進行減肥試驗時，除以上指標必測外，還應進行機體營養狀況檢測，運動耐力測試以及與健康有關的其它指標的觀察。人體試食試驗為必做項目，動物試驗與人體試食試驗相結合，綜合進行評價。
                3.6.4 結果判定
                在動物試驗中，體重及體內脂肪墊2個指標均陽性，并且對機體健康無明顯損害，即可初步判定該受試物具有減肥作用。
                在人體試食試驗中，體內脂肪量顯著減少，且對機體健康無明顯損害，可判定該受試物具有減肥作用。
                3.7 耐缺氧作用
                3.7.1 試驗項目
                小鼠常壓耐缺氧實驗
                3.7.2 結果判定
                耐缺氧實驗陽性，說明該受試物具有耐缺氧作用。
                3.8 抗輻射作用
                3.8.1 試驗項目
                3.8.1.1 亞急性試驗
                30天存活率或平均存活時間
                白細胞總數
                3.8.1.2 亞慢性或慢性試驗
                小鼠睪丸染色體畸變試驗
                小鼠骨髓細胞微核試驗
                3.8.2 試驗原則
                較高劑量一次輻射，選擇亞急性試驗；小劑量多次輻射，選擇亞慢性或慢性試驗。
                3.8.3 結果判定
                亞急性試驗項目中2項結果為陽性，則可判定該受試物對較高劑量一次輻射有拮抗作用。
                亞慢性或慢性試驗中2項結果為陽性，則可判定該受試物對小劑量多次輻射有拮抗作用。
                3.9 抗突變作用
                3.9.1 試驗項目
                Ames試驗或V79細胞基因突變試驗
                小鼠骨髓細胞微核試驗
                小鼠睪丸染色體畸變試驗
                3.9.2 試驗原則
                Ames試驗與V79細胞基因突變試驗任選一項，采用體內與體外試驗相結合的原則。
                3.9.3 結果判定
                抗突變三項試驗中有兩項為陽性時，則可判定該受試物具有抗突變作用。
                3.10 抑制腫瘤作用
                3.10.1 試驗項目
                動物誘發性腫瘤試驗
                動物移植性腫瘤試驗
                免疫功能試驗
                N細胞活性測定
                單核－巨噬細胞功能測定
                3.10.2 試驗原則
                動物誘發性腫瘤試驗及動物移植性腫瘤試驗兩項中任選一項，同時必做2項免疫功能試驗
                3.10.3 結果判定
                動物誘發性腫瘤試驗及動物移植性腫瘤試驗兩項試驗中有一項為陽性，并且對免疫功能無抑作用，則可判定該受試物具有抑制腫瘤的作用。
                3.11 調節血脂作用
                3.11.1 試驗項目
                大鼠脂代謝紊亂模型法
                人體試食試驗
                3.11.2 試驗原則
                盡可能動物試驗和人體試食試驗相結合，綜合進行評價。
                3.11.3 結果判定
                大鼠脂代謝紊亂模型法：結果為陽性時，可初步判定該受試物具有調節血脂作用。
                人體試食試驗陽性，可判定該受試物對人體具有調節血脂作用。
                3.12 改善性功能作用
                3.12.1 試驗項目
                3.12.1.1 交配試驗
                大鼠交配試驗
                小鼠交配試驗
                3.12.1.2 勃起試驗
                3.12.2 試驗原則
               
            評價改善性功能作用，應主要觀察是否增強性交功能及陰莖勃起功能?？紤]到影響性功能的因素很多，而睪酮對性功能的維持具有重要意義，必要時可對血清睪酮水平進行測定。
                3.12.3 結果判定
                交配試驗（大、小鼠交配試驗任選一項）或勃起試驗中有一項試驗結果為陽性，即可判定該受試物具有改善性功能的作用。
                3.13 人體試食試驗規程
                4.評價食品保健作用時要考慮的因素
                4.1 人的可能攝入量除一般人群的攝入量外，還應考慮特殊的和敏感的人群（如兒童、孕婦及高攝入量人群）。
                4.2
            人體資料由于存在著動物與人之間的種屬差異、在將動物試驗結果外推到人時，應盡可能收集人群服用受試物的效應資料，若體外或體內動物試驗未觀察到或不易觀察到食品的保健效應或觀察到不同效應，而有關資料提示對人有保健作用時，在保證安全的前提下，應進行必要的人體試食試驗。
                4.3 在將本程序所列試驗的陽性結果用于評價食品的保健作用時，應考慮結果的重復性和劑量反應關系，并由此找出其最小有作用劑量。
                4.4 食品保健作用的檢測及評價應由衛生部認定的保健食品功能學檢驗機構承擔。
            附加說明
                本程序和檢驗方法由衛生部衛生監督司提出。
                本程序和檢驗方法由衛生部食品衛生監督檢驗所《保健食品功能學評價程序和檢驗方法》起草小組負責起草。
                本程序和檢驗方法由衛生部委托技術歸口單位衛生部食品衛生監督檢驗所負責解釋。
               
            進行未列入程序范圍的保健食品功能學評價時，應由保健食品的研制生產者提出檢驗及評價方法，經保健食品功能學檢驗機構驗證及衛生部食品衛生監督檢驗所組織專家評審，報衛生部批準后方可列入本程序。
               
            本程序中無明確判定方法的人體試食試驗結果，可由負責試驗單位組織專家組（至少五人），按本程序提出的原則要求共同予以評價，并提出判定結果。
                免疫調節作用檢驗方法
                動物試驗
                1.實驗動物
               
            選用小鼠。推薦使用近交系小鼠，如C57BL/6J、BALB/C等，6－8周齡，18－22g，雌雄均可，數量為單一性別每組至少10只。
                2.給受試物的時間、劑量分組
                經口給予受試物15－30d，設3個劑量組和1個對照組。3個劑量組中，其中1個劑量應相當于人推薦攝入量的10倍左右。
                3.實驗方法
                3.1 ConA誘導的小鼠脾淋巴細胞轉化試驗
                可任選下列方法之一
                3.1.1 M法
                3.1.1.1 原理
               
            當淋巴細胞受ConA、PA等致分裂原或特異性抗原刺激后發生母細胞轉化，活細胞特別是增殖細胞通過線粒體水解　將M（一種淡黃色的唑氮鹽）分解為蘭紫色的甲月替（formazan）結晶而顯色，其光密度值能夠反映細胞的增殖情況。
                3.1.1.2 儀器和材料
               
            RPMI1640細胞培養液、小牛血清、2－巰基乙醇（2－ME）、青霉素、鏈霉素、刀豆蛋白A（ConA）、鹽酸、異丙醇、M、Hanks液、PBS緩沖液（p7.2-7.4）
                200目篩網、24孔培養板，96孔培養板（平底），手術器械、二氧化碳培養箱、酶聯免疫檢測儀、超凈工作臺
                3.1.1.3 實驗步驟
                完全培養液 RPMI1640
            培養液過濾除菌，用前加入10％小牛血清，1％谷氨酰胺（200mmol/L），青霉素（100U/ml），鏈霉素（100ug/L）及5×10-5mol/L的2－巰基乙醇，用無菌的1mol/L的Cl或1mol/L的NaO調p至7.0－7.2，即完全培養液。
                ConA液 用雙蒸水配制成100ug/ml的溶液，過濾除菌，在低溫冰箱（－20℃）保存。
                無菌Hanks液 用前以3.5％的無菌NaCO3調p7.2－7.4。
                M液 將5mgM溶于1ml p7.2的PBS中，現配現用。
                酸性異丙醇溶液 96ml 異丙醇中加入4ml 1mo1/L的C1，臨用前配制。
                3.1.1.3.2 脾細胞懸液制備
               
            無菌取脾，置于盛有適量無菌Hanks液的小平皿中，用鑷子輕輕將脾撕碎，制成單個細胞懸液。經200目篩網過濾，用Hanks液洗3次，每次離心10min
            （1000r/min）。然后將細胞懸浮于2ml的完全培養液中，用臺酚蘭染色計數活細胞數（應在95％以上），調整細胞濃度為2×106個/ml。
                3.1.1.3.3淋巴細胞增殖反應
                將細胞懸液分兩孔加入24孔培養板中，每孔1ml，一孔加50ul
            ConA液（相當5ug/ml），另一孔作為對照，置5%CO2，37℃培養72h。培養結束前4h，每孔輕輕吸去上清液0.7ml不含小牛血清的RPMI1640培養液，同時加入M（5mg/ml）50u1/孔，繼續培養4h。培養結束后，每孔加入1ml酸性異丙醇，吹打混勻，使紫色結晶完全溶解。然后分裝到96孔培養板中，每個孔分裝6孔作為平行樣，用酶聯免疫檢測儀，以570nm波長測定光密度值。也可將溶解液直接移入1ml比色杯中，在721分光光度計上比色測定，波長570nm。
                3.1.1.4 數據處理及結果判定
               
            一般采用方差分析進行數據統計。用加ConA孔的光密度值減去不加ConA孔的光密度值代表淋巴細胞的增殖能力，受試物組的光密度值顯著高于對照組的光密度值，即可判定該項試驗結果陽性。
                3.1.2 同位素摻入法
                3.1.2.1 原理
               
            淋巴細胞在有絲分裂原PA、ConA等的刺激下，產生增殖反應，DNA和RNA合成明顯增加，如在培養液中加入3－胸腺嘧啶核苷（3H－TdR），則可被轉化中的細胞攝入。測定標記淋巴細胞和放射強度可反映淋巴細胞增殖的程度。
                3.1.2.2 儀器和材料
                RPMI－1640細胞培養液、小牛血清、2－巰基乙醇（2－ME）、青霉素、鏈霉素、刀豆蛋白A （ConA）、Hanks液
            、PBS緩沖液（p7.2－7.4）、3H－TdR、閃爍液［2.5－二苯基噁唑（PPO）
            0.5g、1，4－雙－（5－苯基噁唑基）－苯（POPOP）0.25g、二甲苯500ml混勻］
                200目篩網，96孔培養板（平底），手術器械、二氧化碳培養箱、超凈工作臺、液體閃爍儀、多頭細胞取集器、49型玻璃纖維濾紙。
                3.1.2.3 實驗步驟
                3.1.2.3.1 脾細胞懸液制備
               
            無菌取脾，置于盛有適量無菌Hanks液的小平皿中，用鑷子輕輕將脾撕碎，制成單細胞懸液。經200目篩網過濾，用Hanks液洗3次，每次離心10min（1000r/min）。然后將細胞懸浮于2ml的完全培養液中，用臺酚蘭染色計數活細胞數（應在95％以上），最后RPMI1640完全培養液將細胞數調成5×105個/ml。
                3.1.2.3.2 淋巴細胞增殖反應：
               
            將脾細胞懸液加入到96孔培養板中，200ul/孔，每一份脾細胞懸液分裝6個孔，3孔加ConA（5ug/ml），另3個孔不加ConA作為對照。置5％
            CO2，37℃培養72h，培養結束前6h，每孔加入3H－TdR
            20u1，使其終濃度為（3.7－18.5）×104Bq/ml。用多頭細胞取集器將細胞取集于玻璃纖維濾紙上。濾紙片充分干燥后置測量瓶中，加入7ml閃爍液，用液閃儀測定每分鐘脈沖數（cpm）。
                3.1.2.4 數據處理及結果判定
                一般采用方差分析進行數據統計。以每分鐘脈沖數（cpm）表示增殖程度，用刺激指數（SI）來表示試驗孔cpm 。